Eine 70%ige Ethanollösung wird hauptsächlich verwendet, da sie gleichzeitig als biologisches Konservierungsmittel und als chemisches Verarbeitungsmittel dient. Sie gewährleistet die physische Integrität der Probe, indem sie den Verfall stoppt, und löst gleichzeitig chemisch Parasiten, um genaue Zählungen zu gewährleisten.
Kernpunkt: Die Wirksamkeit von Ethanol liegt in seiner Fähigkeit, zwei Probleme gleichzeitig zu lösen: Es stoppt den biologischen Verfall, um die Probenqualität zu erhalten, und löst die haftende Wachsschicht auf den Bienen, um Parasiten wie Varroamilben mechanisch zu lösen.
Der Mechanismus der Parasitenabtrennung
Auflösung des schützenden Wachses
Honigbienen besitzen eine schützende Wachsschicht auf ihrer Körperoberfläche. Diese Schicht erzeugt eine Haftkraft, die es externen Parasiten, insbesondere Varroamilben, ermöglicht, fest am Wirt zu haften.
Ethanol wirkt als chemisches Reinigungsmittel. Es dringt in diese Wachsschicht ein und löst sie auf, wodurch die Bindung zwischen dem Parasiten und der Biene wirksam neutralisiert wird.
Erleichterung der mechanischen Oszillation
Sobald das Ethanol als Netzmittel gewirkt hat, ist die physische Verbindung zwischen Milbe und Biene erheblich geschwächt.
Diese chemische Infiltration ist eine Voraussetzung für die nächste Verarbeitungsstufe: mechanische Oszillation. Ohne die durch das Ethanol verringerte Haftung würde das bloße mechanische Schütteln nicht ausreichen, um eine statistisch signifikante Anzahl von Milben zu lösen.
Biologische Konservierung und Stabilität
Verhinderung des Verfalls
Neben der Abtrennung von Parasiten wirkt 70%iges Ethanol als robustes biologisches Konservierungsmittel.
Nach der Entnahme beginnen Honigbienenproben sofort zu zerfallen. Ethanol dringt in das Gewebe ein, um die mikrobielle Aktivität zu hemmen und den Verfall der Bienekörper zu verhindern, bevor sie im Labor analysiert werden können.
Schutz der Pathogenintegrität
Für innere Parasiten wie Nosema ist die Konservierung ebenso entscheidend. Die Fixierung mit Ethanol stellt sicher, dass Nosemasporen durch den Verfall des Wirts nicht abgebaut werden.
Dadurch bleiben die Proben auch während des Transports oder der Lagerung bei 4°C stabil, was sicherstellt, dass die Tage später durchgeführten Diagnoseverfahren genau bleiben.
Kritische Prozessabhängigkeiten
Die Notwendigkeit der chemischen Infiltration
Ein häufiges Missverständnis ist, dass die Abtrennung von Milben rein mechanisch erfolgt.
Es ist entscheidend zu verstehen, dass die mechanische Abtrennung von der chemischen Vorbereitung abhängt. Wenn der Ethanolschritt übersprungen oder mit einer falschen Lösung durchgeführt wird, bleibt die Haftkraft des Wachses intakt. Dies führt zu falsch-negativen Ergebnissen oder künstlich niedrigen Parasitenanzahlen, unabhängig davon, wie kräftig die Probe geschüttelt wird.
Die richtige Wahl für Ihr Ziel treffen
Um die Genauigkeit Ihrer Diagnosedaten zu gewährleisten, wenden Sie diese Prinzipien basierend auf Ihrem spezifischen Ziel an:
- Wenn Ihr Hauptaugenmerk auf der Quantifizierung von Varroamilben liegt: Stellen Sie sicher, dass die Bienen gründlich eingeweicht werden, damit das Ethanol die Wachsschicht auflösen kann, um die Ablösungsrate während des mechanischen Schüttelns zu maximieren.
- Wenn Ihr Hauptaugenmerk auf Nosema oder Gewebeanalysen liegt: Priorisieren Sie das sofortige Eintauchen der Probe in Ethanol, um das Gewebe zu fixieren und das mikrobielle Wachstum für einen sicheren Transport zu stoppen.
Die korrekte Verwendung von 70%igem Ethanol verwandelt ein einfaches Sammelglas in eine stabilisierte chemische Umgebung, die die Zuverlässigkeit der Daten garantiert.
Zusammenfassungstabelle:
| Funktion | Wirkungsmechanismus | Auswirkung auf die Probenrichtigkeit |
|---|---|---|
| Wachsauflösung | Löst die schützende Wachsschicht der Biene auf | Schwächt die Haftkraft von Varroamilben für eine leichtere Ablösung. |
| Mechanische Unterstützung | Wirkt als Netzmittel während der Oszillation | Stellt sicher, dass Milben während des Schüttelns physisch abgelöst werden. |
| Bio-Konservierung | Hemmt mikrobielle Aktivität und Gewebeverfall | Verhindert den Probenverfall während des Transports und der Lagerung bei 4°C. |
| Pathogenfixierung | Stabilisiert innere Strukturen | Schützt Nosemasporen vor dem Abbau für zuverlässige Labordiagnostik. |
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Referenzen
- Aline Patrícia Turcatto, Rosana de Almeida. Infestação pelo àcaro Varroa destructor (Anderson & Trueman) (Mesostigmata: Varroidae) em Operárias Adultas e em Células de Cria de Abelhas Africanizadas Apis mellifera Linnaeus (Hymenoptera: Apidae) na Região de Franca-SP. DOI: 10.12741/ebrasilis.v5.i3.195
Dieser Artikel basiert auch auf technischen Informationen von HonestBee Wissensdatenbank .
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